凝膠成像儀作為分子生物學實驗的核心設備，通過精準捕捉凝膠中的熒光或化學發光信號，為核酸、蛋白質等生物大分子的分析提供直觀數據。規范操作與科學維護是保障成像質量和實驗準確性的關鍵，本文從專業角度解析凝膠成像儀的操作要點及注意事項。
一、操作前的系統準備要點
1. 硬件檢查與環境適配
開機前需確認儀器各部件連接穩固，包括光源模塊、相機鏡頭、暗箱密封性及樣品臺平整度。特別注意光源類型與實驗需求匹配：紫外光源適用于溴化乙錠（EB）染色的核酸檢測，藍光或白光光源則常用于 SYBR Green 等安全染料或考馬斯亮藍染色的蛋白質凝膠。實驗室環境需控制溫度（20-25℃）和濕度（40%-60%），避免強光直射暗箱，減少環境光對檢測信號的干擾。
2. 凝膠預處理規范
凝膠制備需嚴格遵循實驗設計，瓊脂糖凝膠需完全溶解并冷卻至 50-60℃后倒膠，避免氣泡產生；聚丙烯酰胺凝膠需確保聚合完全，避免條帶拖尾。染色環節建議采用凝膠浸泡染色法，熒光染料染色時間控制在 15-30 分鐘，化學發光底物需現配現用并避光操作。染色后用去離子水輕度漂洗，減少背景污染。
二、成像參數設置與信號捕捉
1. 光源與濾光片組合優化
根據染料激發 / 發射光譜選擇對應濾光片，例如 EB 染色核酸需搭配 302nm 激發濾光片和 590nm 發射濾光片，確保信號特異性。紫外透射儀需注意凝膠厚度與光源距離，通常控制在 10-15cm 以平衡信號強度與分辨率。初次使用建議通過預實驗確定最佳曝光時間：低濃度樣品可延長曝光（30-60 秒），高濃度樣品需縮短曝光（5-10 秒），避免信號過飽和導致條帶失真。
2. 相機與聚焦調整技巧
現代凝膠成像儀多配備 CCD 或 CMOS 相機，需在暗箱完全閉合后進行自動對焦。手動調整時，通過實時預覽畫面觀察條帶邊緣清晰度，避免因焦距偏差導致條帶模糊。對于多色熒光成像，需依次單獨采集各通道信號，防止光譜交叉干擾，例如 GFP 與 RFP 信號需分通道拍攝后再疊加分析。
三、圖像分析與數據處理規范
1. 軟件功能合理應用
使用儀器配套分析軟件時，先進行背景扣除和對比度優化，通過閾值調整分離條帶與背景。條帶定量分析需注意：核酸分子量計算需導入標準 Marker 數據，蛋白質表達量分析需選擇相同泳道的內參進行歸一化。避免過度依賴自動識別功能，手動校驗條帶定位，防止因凝膠邊緣不規則或污漬導致的誤判。
2. 數據存儲與追溯管理
實驗數據需及時備份至專用服務器或移動存儲設備，命名規則建議包含 “實驗日期 + 樣本編號 + 檢測項目”，例如 “20231025_Hela 細胞_EGFR 蛋白表達”。原始圖像需保留未處理版本，便于后續重復性驗證。涉及發表的實驗數據，需記錄儀器型號、光源參數、軟件版本等信息，確保實驗可追溯。
四、日常維護與常見問題應對
1. 儀器維護要點
光路清潔：每周用鏡頭紙蘸無水乙醇擦拭光源透鏡和相機濾光片，去除灰塵和指紋，避免信號衰減；
暗箱檢查：定期檢查暗箱密封條，發現老化或破損及時更換，防止漏光導致背景值升高；
軟件更新：及時安裝廠家提供的軟件補丁，優化算法提升條帶識別精度，同時備份原有方法文件。
2. 典型問題解決方案

故障現象	可能原因	解決措施
條帶信號弱	曝光時間不足 / 染料失效	延長曝光時間，重新制備染色液
背景值過高	暗箱漏光 / 凝膠漂洗不徹底	檢查暗箱密封性，增加漂洗次數
條帶邊緣模糊	焦距偏差 / 凝膠未完全凝固	重新對焦，確保凝膠聚合時間≥30 分鐘
多色信號重疊	濾光片選擇錯誤 / 通道未分離	核對染料光譜參數，分通道單獨采集信號

五、安全操作與合規建議
操作紫外光源時需佩戴防護眼鏡，避免直視激發光；處理 EB 等有毒染料時，需在通風櫥內操作并使用一次性手套。對于生物制藥等合規領域，建議定期進行儀器性能驗證（PQ），記錄光源強度衰減曲線和相機靈敏度參數，確保數據符合 GLP/GMP 規范要求。

凝膠成像儀的高效使用依賴于對儀器原理的理解、參數設置的優化及日常維護的規范。通過標準化操作流程和科學的問題排查，不僅能提升實驗數據質量，更能延長儀器使用壽命。作為分析儀器生產方，我們始終致力于提供更智能的操作界面和更精準的成像技術，助力科研與工業用戶實現高效實驗目標。